结直肠癌是世界范围内肿瘤患者的第三大死因，它是一种自发性、慢性结肠黏膜炎症病变，其发病机制目前尚未清楚。但研究发现，人类最常见的两种慢性炎症性肠道疾病(IBD)是溃疡性结肠炎 (ulcerative colitis，UC)和 Chron’s疾病(CD)，它们均与结直肠癌发生相关。自从日本学者于1985年首次应用硫酸葡聚糖（DSS）制备了鼠UC模型后，大量的动物模型被应用于UC的研究，而DSS结肠炎

一、建模背景——DSS造模发展历程现如今，有多种动物实验模型被广泛用于研究炎症性肠炎（inflammatory bowel disease, IBD）的病因、发病机制及测试新开发药物药效等，尤其以葡聚糖硫酸钠盐（Dextran Sulfate Sodium Salt，DSSMW:36000~50000）结肠炎（ulcerative colitis，UC）模型应用最广。溃疡性结肠炎动物模型发展历程见

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原理：小鼠活体成像是科学研究和药物研发的常用方法。进行此实验的前提是必须要有能稳定表达发光基因的细胞。常用的发光基因包括萤火虫萤光素酶（firefly luciferase，Fluc）、绿色荧光蛋白（GFP）、红色荧光蛋白（tdTomato）。本部分汇集了几种常用的稳定转染了Fluc的癌细胞系，并从Fluc、GFP、tdTomato转基因动物体内分离得到了发光的免疫细胞。这些细胞是进行基础研究和药

HP-1细胞系是从一名患有急性单核细胞白血病的1岁小男孩的外周血中分离得到的，自1980年建系以来，THP-1细胞被广泛用于单核细胞和巨噬细胞相关的机制、信号通路以及营养和药物运输等研究中。相对于U937、HL-60、ML-2等白血病细胞系，THP-1更有类似人原代单核细胞的形态和功能特征（包括细胞分化标记）。相对于人外周血单核细胞（PBMC），THP-1更易在实验室中培养和扩增，且具有更稳定的基

推荐阅读：造血干细胞扩增、转染以及基因编辑优化解决方案T细胞培养技术进展及解决方案PCR技术自从1985年由Mullis发明以来，被广泛的应用到核酸分子的检测当中。但显然，只能定性分析而无法定量，成为困扰科研工作者的一大难题。仅仅在5年之后，就有了一些初步的尝试，并取得了不错的效果。Pang等人在采用了一种PCR后分子显像的方法来进行定量[1]，将PCR的原料ATP用32P标记，掺入到产物中去，用

分享一些培养原代细胞的经验，以小鼠肺微血管内皮细胞为例，希望能够帮助大家排除一些雷区。对原代细胞最直观的理解，就是不能无限传代下去，不论你是自己提取的细胞还是从试剂公司购买的细胞，都会建议你在P2-P3代完成实验是最好的。但是我们都知道，对于细胞实验的需求量，P2-P3代的细胞数量很难满足。所以，掌握提取和培养原代细胞的技巧，尽可能地让细胞的好状态多维持几代，对实验成败来说至关重要。细胞培养：小鼠

酶联免疫斑点法(enzyme linked immunospot assay, ELISPOT) ，作为一项新型的免疫酶技术，是从单细胞水平检测分泌抗体细胞(ASC) 或分泌细胞因子(CK) 细胞的一项细胞免疫学检测技术。由于该方法敏感性高，易操作，成本相对流式细胞分析术也较低，已被广泛用于分泌CK细胞检测或ASC测定中。原理：细胞受到刺激后局部产生细胞因子，此细胞因子被特异单克隆抗体捕获，被捕获

哺乳动物生物发光，一般是将Firefly luciferase基因（由554个氨基酸构成，约50KD）即荧光素酶基因整合到预期观察的细胞染色体DNA上以表达荧光素酶，培养出能稳定表达荧光素酶的细胞株，当细胞分裂、转移、分化时,荧光素酶也会得到持续稳定的表达。将标记好的细胞接种到实验动物体内后，当外源（腹腔或静脉注射）给予其底物荧光素(luciferin)，即可在几分钟内产生发光现象。这种酶在ATP

人类对于核酸的研究已经有100多年的历史。20世纪60年代末70年代初，人们致力于研究基因的体外分离技术。在此，pcr技术应运而生。PCR(Polymerase Chain Reaction)，即“聚合酶链式反应”，是为了解决在体外特异性地扩增某个基因的问题，从而满足对核酸的体外研究和应用。pcr技术发展：时间大事记1953DNA结构基础沃森和克里克发表的DNA双螺旋结构模型标志着分子生物学的诞生